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• 1、土壤基因提取試劑盒
• 2、酶的提取:固液比1:5,20℃提取30分鐘,共提取三次如何操作?
• 3、給出一種酶,如何設計其純化方案?

土壤基因提取試劑盒

以下是一份詳細的土壤DNA提取試劑盒的組成部分：產品編號D8101： 包含5個純化柱子，每個單獨包裝，總計550個，用于高效純化DNA樣本。D8105： 提供100個收集管，用于樣本采集和儲存，確保樣本處理過程中的無菌操作。D8106： 包含緩沖液C1，4毫升的總量，用于特定步驟中DNA的溶解和穩定。

在土壤DNA提取過程中，首先，將土壤樣品與懸浮緩沖液Buffer C1混合，隨后加入玻璃珠和專利的腐殖酸吸附劑Buffer C2。通過渦旋攪拌，土壤充分分散，使腐殖酸能有效從土壤中釋放出來，吸附在吸附劑上。

then place on a rocker orinvert by hand for 3-5 minutes to allow binding of DNA to matrix.14000轉速下離心5分鐘，使顆粒沉淀。將上清液(600-800μL)轉移到干凈的0 ml microcentrifuge tube中。

博凌科為土壤基因組DNA快速提取試劑盒（離心柱型）用于快速的從各種細菌中提取基因組DNA。

普通的手提或者試劑盒提取的土壤基因組DNA由于常常殘留有PCR的強烈抑制物如腐殖酸、棕黃酸等雜質造成實驗失敗，此外，由于采用了劇烈的玻璃珠擊打來破裂菌體，常常造成DNA剪切和降解。

酶的提取:固液比1:5,20℃提取30分鐘,共提取三次如何操作?

1、(1) 預先將恒溫水浴調到50℃，將盛有粗級分I的離心管穩妥地放入水浴中，45℃下保溫30分鐘，在保溫過程中不斷輕搖離心管。(2) 取出離心管，于冰浴中迅速冷卻，用4℃，10000rpm，離心10min。

2、研究結果表明：稻殼中木聚糖的含量占絕干原料的19％，在堿法提取過程中，通過調節堿濃度、固液比、抽提溫度和抽提時間因素的影響，確定了較佳的提取條件：堿濃度10％，固液比1：10，抽提時間3h，抽提溫度60～95℃。木聚糖的提取率可達到650％以上。

3、提取率先升高說明固液比逐漸增加值最佳值，后下降，說明固液比超過了最佳值。

4、實驗操作 提取 (1) 準備一個冰浴，將研缽穩妥放入冰浴中。(2) 將10g濕啤酒酵母，和適量(5g)二氧化硅一起放入研缽中。二氧化硅要預先研細。 (3) 緩慢加入預冷的30mL去離子水，每次加2mL左右，邊加邊研磨，至少用30分鐘。以便將蔗糖酶充分轉入水相，至酵母細胞大部分研碎，以便將蔗糖酶充分轉入水相中。

5、辣椒堿提取工藝的優化設計 辣椒堿易溶于多種有機溶劑，選用九種有機溶劑進行比較，結果表明：從提取效率和經濟成本這兩方面來考慮，乙醇可作為提取辣椒堿的最佳浸提劑。

給出一種酶,如何設計其純化方案?

給出一種酶，如何設計其純化方案？ 這是哈爾濱工業大學威海校區《生化分離工程》的考試題；酶不知道是胞內產物還是胞外產物；要考慮不同性質的酶；純化方案從粗分級到細分級應明細各步驟。

酶的分離純化一般包括三個基本步驟：即抽提、純化、結晶或制劑。首先將所需的酶從原料中引入溶液，此時不可避免地夾帶著一些雜質，然后再將此酶從溶液中選擇性地分離出來，或者從此溶液中選擇性地除去雜質，然后制成純化的酶制劑。

現有的酶分離純化方法都是依據酶和雜蛋白在性質上的差異而建立的。 根據分子大小而設計的方法，如離心分離法、篩膜分離法、凝膠過濾法等。 根據溶解度的大小分離的方法，如鹽析法，有機溶劑沉淀法，共沉淀法。

先找到測定毒素含量的方法。如果是胞外酶，就取菌A的培養液離心取上清過柱，測定各搜集管的酶活性。酶活高的就是你要的東西，然后視是否有雜蛋白等情況再過柱，透析等。如果是胞內酶，就取菌體沉淀，破碎后一樣過柱。

酶的分離純化一般包括三個基本步驟： 即抽提、 純化、 結晶或制劑。首先將所需的酶從原料中引入溶液， 此時不可避免地夾帶著一些雜質， 然后再將此酶從溶液中選擇性地分離出來， 或者從此溶液中選擇性地除去雜質， 然后制成純化的酶。

提取來源樣品：甘露聚糖酶來源于某些微生物、真菌、動植物等。細胞破碎：將細胞打碎，釋放出酶。過濾：用濾紙或濾膜過濾掉大分子物質。酶的初步分離：用硫酸銨等鹽類沉淀酶，并將沉淀物溶解于緩沖液中。